T1. Conceptos estadísticos: sensibilidad, especificidad y valores predictivos de las pruebas.
T2. Examen microscopico: tinciones, examen en fresco, sedimento de orina, técnicas de concentración de heces, etc.
T3. Cultivo de bacterias, hongos y virus: medios, atmósferas, cuantificación, secuantificación , microcultivos, cultivos celulares, etc.
T4. Identificación de microorganismos: identificaciones morfológicas, metabólicas, por espectrometria de masas. Manual y automatizada. Bases de datos de identificación fenotípica. Correlación fenotipo/genotipo.
T5. Estudios de sensibilidad e interpretación: manuales y automatizados. Difusión en disco, micro y macrodilución.
T6. Detección de antigeno: aglutinación en látex, inmunocromatografia, inmunofluorescencia, ELISA, etc.
T7. Serología: aglutinación, inmunofluorescencia, ELISA. Métodos manuales y automatizados, métodos confirmatorios (WB, RIBA). Avidez.
T8. Diagnóstico de infecciones congénitas.
T9. Control de poblaciones y de prevalencia. Control de vacunaciones.
T10. Exploración de la inmunidad celular: intradermoreacciones. detección de producción de interferon gamma.
S1. Exposición de temas metodológicos por parte de los alumnos.
P1. Visión microscópica y cultivo.
P2. Microscopía de parásitos.
P3. Lectura de cultivo y antibiograma.
P4. Interpretación de antibiograma.
P5. Serología y detección de antígeno I.
P6. Serología y detección de antígeno II.
P7. Identificación con MALDI-TOF.